FUNCTIONAL STATE OF RAT KIDNEYS UNDER CONDITIONS OF WATER AND SALT LOADING
DOI:
https://doi.org/10.30890/2709-2313.2024-26-00-015Keywords:
kidneys, water and salt loading, acid-regulating, ion-regulating and excretory functionsAbstract
The stability of water-salt metabolism is a prerequisite for the normal functioning of the body. After drinking water or in case of its excess in the body, the concentration of soluble osmotically active substances in the blood decreases. It reduces the aMetrics
References
Бойчук Т. М. Вплив препарату GA-40 на перебіг гепаторенального синд-рому на поліуричній стадії сулемової нефропатії. Т. М. Бойчук, Ю.Є. Рого¬вий, В. В. Білоокий, О. В. Злотар. Одеський мед. ж. – 2011. – №4 (126). – С. 4–7.
Бойчук Т. М. Патофізіологія гепаторенального синдрому при гемічній гіпоксії. Т. М. Бойчук, Ю. Є. Роговий, Г. Б. Попович.‒ Чернівці: місто, 2012. ‒ 191 с.
Булик Р. Є. Особливості хроноритмологічної організації функції нирок за умови блокади синтезу ниркових простагландинів. Р. Є. Булик. Бук. мед. вісник. – 2002. – Т. 6, № 3-4. – С. 132-136.
Бурлака Н. І. Механізми ниркового функціонального резерву в нормі та при сулемовій нефропатії : автореф. дис. на здобуття наук. ступеня канд. біол. наук : спец. 14.03.04 „Патологічна фізіологія”. Н. І. Бурлака. – Луганськ, 2008. – 20 с.
Возіанов О.Ф. Гостра ниркова недостатність. О.Ф. Возіанов, А.І. Гоженко, О.С. Федорук. – Одеса: Одес. держ. мед. ун-т., 2003. – 376 с.
Ганонг Вільям Ф. Фізіологія людини. Вільям Ф. Ганонг. – Львів, 2002. –С.669–678.
Гоженко А. І. «Приховане» ушкодження проксимального відділу нефрону А. І. Гоженко, Ю. Є. Роговий, О. С. Федорук. Одеський мед. ж. – 2001. – № 5 (67). – С. 16–19.
Гоженко А. І. Нирковий функціональний резерв при хронічних токсичних неф¬ро¬патіях. А. І. Гоженко, С. Г. Котюжинська, Н. І. Бурлака. Акт. пробл. трансп. мед. – 2007. – № 1(7). – С.131–134.
Гончарова Л. В. Патогенез порушень ниркових функцій при експеримен-тальному токсичному гепатиті, індукованому чотирихлористим вуглецем : автореф. дис. на здобуття наук. ступеня канд. мед. наук : спец. 14.03.04 „Патологічна фізіологія”. Н. І. Бурлака. – Одеса, 2006. – 20 с.
Гончарова Л. В. Про патогенез порушень осморегулюючої функції нирок у щурів при експериментальному гепаторенальному синдромі. Л.В. Гонча¬рова. Cучасні досягнення спор¬тивної медицини, лікувальної фізкультури та валеології : ХI міжнар. наук.-практ. конф. : тези доп. – Одеса, 2005. – С. 84.
Доцюк Л. Г. Показники циркадіанного ритму функціонального стану нирок при експериментальному нефриті під впливом селегіліну-селективного інгібітора моноамінооксидази-В. Л. Г. Доцюк, І.Г. Куш нір. Експерим. і клін. мед. – 2011. – №4. – С. 51–53.
Калугін В.О. Нефрологія – досягнення та невирішені питання. В.О. Калугін, В. П. Пішак, Ю. Є. Роговий. Бук. мед. вісник. – 2004. – Т. 8, Ювіл. вип. – С. 86–90.
Кухарчук О. Л. Простагландини нирок та нефрологічна патологія. О. Л. Ку¬харчук. Простагландини. – Чернівці: Медінститут, 1997. – С. 38–42.
Мацьопа І. В. Адаптація антиоксидантної системи нирок щурів до різних світлових режимів за інтоксикації тетрахлорметаном та дії мелатоніну. І. В. Мацьопа, Н. П. Григор’єва, І. Ф. Мещишен. Укр. біохім. ж. – 2010. – Т. 82, № 2. – С. 79–88.
Никула Т. Д. Діагностика гломерулонефриту та хронічної ниркової недос¬татності. Т. Д. Никула. – К.: Задруга, 2000. – 128 с.
Нирковий функціональний резерв при хронічних токсичних нефропатіях А. І. Гоженко, С. Г. Котюжинська, Н. І. Бурлака [та ін.]. Акт. пробл. транспорт. мед. – 2007. – № 1(7). – С.131–134.
Пішак В. П. Організація хроноритмів екскреторної та кислотовидільної функції нирок білих щурів. В. П. Пішак, В. Г. Висоцька, М.І. Кривчансь-ка. Бук. мед. вісник. – 2008. – Т. 12, №4. – С. 105–108.
Пішак В. П. Хроноритмічні особливості екскреторної функції нирок за умов гіпофункції шишкоподібної залози. В. П. Пішак, Р. Є. Булик, Н. М. Шумко. Бук. мед. вісник. – 2005. – № 1. – С. 94–96.
“Приховане” ушкодження проксимального відділу нефрону .А.І. Гоженко, Ю. Є. Роговий, О. С. Федорук [та ін.]. Одеський мед. ж. – 2001. – № 5. – С. 16–19.
Роговий Ю. Є. Патофізіологічний аналіз поліуричної стадії гострої нирко¬вої недостатності при сулемовій інтоксикації. Ю. Є. Роговий, О.В. Зло¬тар, Л. О. Філіпова. Бук. мед. вісник. – 2006. – Т. 10, №2. – С. 108–111.
Слободян К. Вплив сулеми на функціональний стан нирок за умов наван-таження 3% розчином хлориду натрію. К. Слободян, Ю. Роговий, В. Швець. Гал. лікар. вісник. – 2011. – Т. 18, №1. – С. 87–88.
Сучасні методи експериментальних та клінічних досліджень центральної науково–дослідної лабораторії Буковинської державної медичної академії: метод. посіб. В. М. Магаляс, А. О.Міхєєв, Ю.Є. Роговий [та ін]. – Чернівці, 2001. – 43 с.
Федорук О. С. Період вторинної олігурії в перебігу гострої ниркової недостатності. О. С. Федорук. Укр. мед. вісті. – 2001. – Т. 4, № 1. – С. 112.
Швець В. І. Зміни регуляції гемостазу та водно-сольового обміну при змен¬¬шенні об’єму циркулюючої крові. В. І Швець, С. І. Анохіна, Н. В. Швець. Клін. та експерим. патол. – 2010. – Т. 9, № 2(32). – С. 119–121.
Швець В. І. Корекція порушень функціонального стану нирок у щурів з мікстовою свинцево-кадмієвою субхронічною інтоксикацією. В. І. Швець. Соврем. пробл. токсикол. – 2007. – №2. – С. 14–17.
Alcázar Arroyo R. Electrolyte and acid-base balance disorders in advanced chronic kidney disease. R. Alcázar Arroyo. Nefrologia. – 2008. – Vol. 28, Suppl 3. – P. 87-93.
Aniya Y. Mitochondrial glutathione transferases involving a new function for membrane permeability transition pore regulation. Y. Aniya, N. Imaizumi. Drug Metab. Rev. – 2011. – Vol. 43, N2. – P. 292-299.
Asagba S.O. Comparative effect of water and food-chain mediated cadmium exposure in rats. S.O. Asagba. Biometals. – 2010. – Vol. 23, N6. – P. 961-971.
Becker A. The Role of Intracellular Glutathione in Inorganic Mercury-Induced Toxicity in Neuroblastoma Cells. A. Becker, K. F. Soliman. Neurochem. Res. – 2009. – Vol. 34, N9. – P. 1677–1684.
Cleva V. Antioxidant-Induced Stress. V. Cleva, D. Robert. Int. J. Mol. Sci. – 2012. – Vol. 13, N2. – P. 2091–2109.
Different role of Schisandrin B on mercury-induced renal damage in vivo and in vitro. A. Stacchiotti, G. Li Volti, A. Lavazza [et al.]. Toxicology. – 2011. – Vol. 286, N1-3. – P. 48-57.
Diphenyl diselenide potentiates nephrotoxicity induced by mercuric chloride in mice. R. Brandão, R.N. Moresco, L.P. Bellé [et al.]. J. Appl. Toxicol. – 2011. – Vol. 31, N8. – P. 773-782.
Du J. Molecular mechanisms activating muscle protein degradation in chronic kidney disease and other catabolic conditions. J. Du, Z. Hu, W. Mitch. Eur. J. Clin. Invest. – 2005. – Vol. 35, N 3. – P. 157–163.
Effect of uric acid on nephrotoxicity induced by mercuric chloride in rats. P. Durante, F. Romero, M. Pérez [et al.]. Toxicol. Ind. Health. – 2010. – Vol. 26, N3. – P. 163-174.
Effects of mercury and selenite on delta-aminolevulinate dehydratase activity and on selected oxidative stress parameters in rats J. Perottoni, L.P. Lobato, A. Silveira [et al.]. Environ. Res. – 2004. – Vol. 95, N2. – P. 166-173.
Eruca sativa seeds possess antioxidant activity and exert a protective effect on mercuric chloride induced renal toxicity. M. Sarwar Alam, G. Kaur, Z. Jabbar [et al.]. Food Chem. Toxicol. – 2007. – Vol. 45, N6. – P. 910-920.
Experimental study on the effects of BSO, GSH, vitamin C and DMPS on the nephrotoxicity induced by mercury. X. Zhao-Fa, Y. Jing-Hua, Y. Jia-Ming [et al.]. Wei Sheng Yan Jiu. – 2005. – Vol. 34, N5. – P. 533-536.
Firsov D. Role of the renal circadian timing system in maintaining water and electrolytes homeostasis. D. Firsov, N. Tokonami, O. Bonny. Mol. Cell Endocrinol. – 2012. – Vol. 349, N1. – P. 51-55.
Forman H. J. Glutathione: overview of its protective roles, measurement, and biosynthesis. H. J. Forman, H. Zhang, A. Rinna. Mol. Aspects Med. – 2009. – Vol. 30, N1-2. – P. 1-12.
Giordano G. Assessment of glutathione homeostasis. G. Giordano, C. C. White, L. G. Costa. Methods Mol. Biol. – 2011. – Vol. 758. – P. 205-214.
Glodny B.The vasodepressor function of the kidney:Prostaglandin E2 is not the principal vasodepressor lipid of the renal medulla. B. Glodny. Acta Physiol. Scand. – 2006. – N3. – P. 419–429.
Glomerular hyperfiltration: definitions, mechanisms and clinical implications. I. Helal, G.M. Fick-Brosnahan, B. Reed-Gitomer, R.W. Schrier. Nat. Rev. Nephrol. – 2012. – Vol. 8, N5. – P. 293-300.
Glutathione and glutathione-linked enzymes in normal human aortic smooth muscle cells: chemical inducibility and protection against reactive oxygen and nitrogen species-induced injury. H. Zhu, Z. Cao, L. Zhang [et al.]. Mol. Cell Biochem. – 2007. – Vol. 301, N1-2. – P. 47-59.
Jan A.T. Glutathione as an antioxidant in inorganic mercury induced nephro-toxicity. A.T. Jan, A. Ali, Q. Haq. Postgrad. Med. – 2011. – Vol. 57, N1. – P. 72-77.
Lash L. H. Renal glutathione transport: Identification of carriers, physiological functions, and controversies. L. H. Lash. Biofactors. – 2009. – Vol. 35, N6. – P. 500-508.
Lee J.H. Mercuric chloride induces apoptosis in MDCK cells. J.H. Lee, J.H. Youm, K.S. Kwon. J. Prev. Med. Public Health. – 2006. – Vol. 39, N3. – P. 199-204.
Lipid peroxidation and decomposition-conflicting roles in plaque vulnerability and stability. S. Parthasarathy, D. Litvinov, K. Selvara, M. Garelnabi. Biochim. Biophys. Acta. – 2008. – Vol. 1781, N5. – P. 221–231.
Lipid peroxidative damage on Cisplatin exposure and alterations in antioxidant defense system in rat kidneys: a possible protective effect of selenium. B.I. Ognjanović, N.Z. Djordjević, M.M. Matić [et al.]. J. Mol. Sci. – 2012. – Vol. 13, N2. – P. 1790-1803.
Melatonin reduces urinary excretion of N-acetyl-beta-D-glucosaminidase, albumin and renal oxidative markers in diabetic rats. F. Oktem, F. Ozguner, H. R. Yilmaz [et al.]. Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. – 2006. – Vol. 33, N1-2. – P. 95-101.
Mercury-induced membranous nephropathy: clinical and pathological features. S.J. Li, S.H. Zhang, H.P. Chen [et al.]. Clin. J. Am. Soc. Nephrol. – 2010. – Vol. 5, N3. – P. 439-444.
Methylation of the Glutathione-S-Transferase M3 Gene Promoter is Associated with Oxidative Stress in Acute-on-Chronic Hepatitis B Liver Failure. L. Qi, Z.Q. Zou, L.Y. Wang [et al.]. Tohoku J. Exp. Med. – 2012. – Vol. 228, N1. – P. 43-51.
Nephrotoxicity of mercuric chloride, methylmercury and cinnabar-containing Zhu-Sha-An-Shen-Wan in rats. J.Z. Shi, F. Kang, Q. Wu [et al.]. Toxicol. Lett. – 2011. – Vol. 200, N3. – P. 194-200.
Nie J. Role of reactive oxygen species in the renal fibrosis. J. Nie, F.F. Hou. Chin. Med. J. – 2012. – Vol. 125, N14. – P. 2598-2602.
Nitta K. Clinical assessment and management of dyslipidemia in patients with chronic kidney disease. K. Nitta. Clin. Exp. Nephrol. – 2012. – Vol. 16, N4. – P. 522-529.
Prediction of chronic renal insufficiency after coronary angiography by an early increase in oxidative stress and decrease in glomerular filtration rate. K. Tajiri, H. Maruyama, A. Sato [et al.]. Circ. J. – 2011. – Vol. 75, N2. – P. 437-442.
Pro-inflammatory role of angiotensin II in mercuric chloride-induced nephropathy in rats. C. Peña, J.P. Hernández-Fonseca, J. Rincón [et al.]. J. Immunotoxicol. – 2012. – Vol. 23. – P.565-571.
Repeated intravenous infusion of human apolipoprotein, Na+ kringle V is associated with reversible dose-dependent acute tubulointerstitial nephritis without affecting glomerular filtration function. H.J. Lee, H.K. Yu, J.H. Ahn [et al.]. Toxicol. Lett. – 2012. – Vol. 212, N3. – P. 298-306.
Rojas-Rivera J. Antioxidants in kidney diseases: the impact of bardoxolone methyl. J. Rojas-Rivera, A. Ortiz, J. Egido. Int. J. Nephrol. – 2012. – Vol. 4. – P. 238-244.
Role serotonin in nephrotoxic serum nephritis in WKY rats. H. Kanai, K. Hiro¬mura, T. Kuroiwa [et al.]. J. Lab. and Clin. Medicine. – 2009. – Vol. 72, N 7. – P. 699–710.
Rooney J. The role of thiols, dithiols, nutritional factors and interacting ligands in the toxicology of mercury. J. Rooney. Toxicology. – 2007. – Vol. 234, N3. – P. 145-156.
Sahin E. Stress-dependent induction of protein oxidation, lipid peroxidation and anti-oxidants in peripheral tissues of rats: comparison of three stress models immobilization, cold and immobilization-cold). E. Sahin, S. Gümüşlü. Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. – 2007. –– Vol. 34, N5-6. – P. 425-431.
Stress proteins and oxidative damage in a renal derived cell line exposed to inorganic mercury and lead. A. Stacchiotti, F. Morandini, F. Bettoni [et al.]. Toxicology. – 2009. – Vol. 264, N3. – P. 215-224.
Stress proteins in experimental nephrotoxicity: a ten year experience. A. Stacchiotti, F. Bonomini, G. Favero [et al.]. Ital. J. Anat. Embryol. – 2010. – Vol. 115, N1-2. – P. 153-158.
The influence of glutathione on redox regulation by antioxidant proteins and apoptosis in macrophages exposed to 2-hydroxyethyl methacrylate. S. Krifka, K.A. Hiller, G. Spagnuolo [et al.]. Biomaterials. – 2012. – Vol. 33, N21. – P. 5177-5186.
Townsend D. M. S-glutathionylation: indicator of cell stress and regulator of the unfolded protein response. D. M. Townsend. Mol. Interv. – 2007. – Vol. 7, N6. – P. 313-324.
Tubular stress proteins and nitric oxide synthase expression in rat kidney exposed to mercuric chloride and melatonin. A. Stacchiotti, F. Ricci, R. Rezzani [et al.]. J. Histochem. Cytochem. – 2006. – Vol. 54, N10. – P. 1149-57.
Vaziri N. D. Lipid disorders and their relevance to outcomes in chronic kidney disease. N. D. Vaziri, K. Norris. Blood Purif. – 2011. – Vol. 31, N1-3. – P. 189-196.
Downloads
Published
How to Cite
Issue
Section
License
Copyright (c) 2024 Authors
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
